4,5 years -old provenance/ progeny test analysis of juglans neotropica diels in Tunshi, Ecuador
DOI:
https://doi.org/10.56294/sctconf2024.1426Keywords:
Native tree species, Seed sources, Tree improvement, Nogal, SilvicultureAbstract
Introduction: Juglans neotropica Diels (walnut), a tree species native to the Andes, has a high commercial and socioeconomic value due to its fine wood, use in the textile industry, food and medicine. Objective: analyze and select the best ranking individuals in the walnut breeding population established at the Polytechnic School of Chimborazo (ESPOCH), in order to establish a seed orchard. Methods: a provenance/progeny trial was evaluated at Tunshi Experimental Station of ESPOCH-Riobamba-Ecuador, which included 540 progenies from 45 families from the Chimborazo, Tungurahua, Bolívar, Pichincha and Imbabura provenances. In a randomized complete block design, normal diameter, total height, commercial height, wood volume and tree quality, including health, were evaluated. The data was analyzed with SELEGEN software to obtain the parameters and the genetic ranking. Results: low genetic differentiation was found among provenances, where individual heritability ranged from 0.09 to 0.18 for normal diameter and commercial volume. Genetic variation among families doubled that of provenances (7 to 14 %); while Tungurahua led the ranking of provenances. The best 20 individuals in the ranking registered an expected genetic gain of 18 % in commercial volume. While the best diameter growth implies a 10 % reduction in the time to reach harvest time. Conclusion: the breeding population registered a wide genetic variability, essential to continue with improvement and conservation actions. Individuals without any phytosanitary problems were identified, suggesting some associated genetic control
References
1. Woll JC, Reynel C, Palacios RS, Hermoza RM, Chávez JM. Diversidad y composición florística en un bosque con abundancia de nogal (Juglans neotropica Diels) en Chanchamayo / Junín / Perú. Ecología Aplicada, 2023; 22(1). https://doi.org/10.21704/rea.v22i1.2027 DOI: https://doi.org/10.21704/rea.v22i1.2027
2. Toro E, Roldán I. Estado del arte, propagación y conservación de Juglans neotropica Diels., en zonas andinas. Revista Madera y Bosques, 2018; 24(1). https://doi.org/10.21829/myb.2018.2411560 DOI: https://doi.org/10.21829/myb.2018.2411560
3. Vásquez R, Rojas R, Monteagudo AL, Valenzuela L, Huamantupa I. Catálogo de los Árboles del Perú. Revista Q’euña, 9 (Número Especial). Cusco-Perú. 2018. https://www.researchgate.net/publication/326096419
4. Ospina Penagos CM, Hernández Retrepo RJ, Aristizabal Valencia FA, Patiño Castaño JN, Salazar Castaño JW. El cedro negro: una especie promisoria en la zona cafetera, Centro Nacional de Investigaciones de Café "Pedro Uribe Mejía" Caldas, Colombia. 2003. DOI: https://doi.org/10.38141/10781/025
5. Rosero E. Autoecología de la especie Nogal. INEFAN-C.F., Quito, Ecuador. 1996.
6. Méndez JM. Manejo de semillas de 100 especies forestales de América Latina. Danida Forest Seed Centre (DFSC) y Proyecto Semillas Forestales (PROSEFOR). Serie técnica. Manual técnico/ 30. CATIE No. 41, 209 pp. CATIE, Turrialba, Costa Rica. 2000. http://orton.catie.ac.cr/REPDOC/A4588E/A4588E.PDF en abril 2024. https://repositorio.catie.ac.cr/handle/11554/2959
7. Nieto VM, Rodríguez J. Juglandaceae (Walnut family). Corporación Nacional de Investigación of Forestal. Santa Fé de Bogota, Colombia. 2010.
8. Alberca N. Análisis de la efectividad de cinco microsatélites para detectar la diversidad genética de Juglans neotropica. [Tesis de Bioquímico farmacéutico]. Loja: Universidad Técnica Particular de Loja; 2014. Repositorio DSPACE de la Universidad Particular de Loja. https://dspace.utpl.edu.ec/bitstream/123456789/9093/1/Alberca%20Jarramillo%20Nathalia%20Veronica.pdf
9. National Research Council. Lost crops of the Incas: Little-known plants of the Andes with promise for worldwide cultivation. National Academy Press, Washington, D.C; 1989.
10. Hassani D, Sarikhani S, Dastjerdi R, Mahmoudi R, Soleimani A, Vahdati K. Situation and recent trends on cultivation and breeding of Persian walnut in Iran. Scientia Horticulturae. 2020; 270,109369. https://doi.org/10. 1016/j.scienta.2020 DOI: https://doi.org/10.1016/j.scienta.2020.109369
11. Vahdati K, Sarikhani S, Arab MM, Leslie CA, Dandekar AM, Aletà,N. et al. Advances in Rootstock Breeding of Nut Trees: Objectives and Strategies. Plants. [Internet]. 2021. [Consultado el 20 de julio de 2024]; 10, 2234. https://doi.org/10.3390/plants10112234 DOI: https://doi.org/10.3390/plants10112234
12. Chusquillo-Calapiña LA. Diseño de un proceso para la obtención de compuestos fenólicos del pericarpio de la semilla del nogal (Juglans Neotrópica Diels) y extracción del aceite de nuez. [Tesis Ingeniería Química y agroindustria]. Quito: Universidad Politécnica Nacional; 2014. Repositorio BIBDIGITAL Escuela Politécnica Nacional. http://bibdigital.epn.edu.ec/handle/15000/8645
13. Azas RD. Evaluación del efecto de los tratamientos pregerminativos en semillas de nogal (Juglans neotropica Diels) en el recinto Pumin provincia de Bolívar. [Tesis de licenciatura]. Santo Domingo de los Tsáchilas: Universidad de las Fuerzas Armadas; 2016. Repositorio DSpace Repository de la Universidad de las Fuerzas Armadas. https://repositorio.espe.edu.ec/xmlui/handle/21000/10697
14. Villota-Guerrón EL, Rosero-Chamorro EG, Farias-Mejía AA, Valencia-Valenzuela XG, Carvajal-Benavides JG, Benalcázar-Villalba SM. Propiedades Tecnológicas de la Madera de Nogal Juglans neotropica Diels, en la Provincia Carchi Ecuador. Ciencia Latina. [Internet]. 2024. [Consultado el 15 de agosto de 2024]; 8(1) https://doi.org/10.37811/cl_rcm.v8i1.9549 DOI: https://doi.org/10.37811/cl_rcm.v8i1.9549
15. Ponce G, Morales D. Estudio de procesos de elaboración de tintes naturales con dos especies vegetales "Nogal" (Junglans neotropica) y "Guarango" (Caesalpinia spinosa) y propuesta de revalorización de saberes ancestrales con las mujeres de la Asociación de Artesanas “Wuarmi Maki” comunidad de Peguche en el Cantón Otavalo. [Tesis de Ingeniería]. Ibarra: Universidad Técnica del Norte; 2011.
16. Mallavadhani UV, Prasad CV, Shrivastava S, Naidu V. Synthesis and anticancer activity of some novel 5, 6-fused hybrids of juglone based 1, 4-naphthoquinones. European Journal of Medicinal Chemistry [Internet]. 2014. [Consultado el 5 de junio de 2024]; 83(1): 84–91. https://doi.org/10.1016/j.ejmech.2014.06.012 DOI: https://doi.org/10.1016/j.ejmech.2014.06.012
17. Yin-Gi J, Eul-Bee K, Kyung-Chul Ch. Gallic acid, a phenolic acid, hinders the progression of prostate cancer by inhibition of histone deacetylase 1 and 2 expression. The Journal of nutritional biochemistry. [Internet]. 2020. [Consultado el 5 de junio de 2024]; 84, 108444. https://doi.org/10.1016/j.jnutbio.2020.108444 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jnutbio.2020.108444
18. Estrada W. Manual para la producción de nogal (Juglans neotropica Diels). Editorial EDI-U. Ibarra-Ecuador. 1997.
19. Mollica A, Zengin G, Locatelli M, Stefanucci A, Macedonio G, Bellagamba G. et. al. An assessment of the nutraceutical potential of Juglans regia L. leaf powder in diabetic rats. Food and Chemical Toxicology [Internet]. 2017. [Consultado el 19 de julio de 2024]; 107, Par B, pp. 554–564. https://doi.org/10.1016/j.fct.2017.03.056 DOI: https://doi.org/10.1016/j.fct.2017.03.056
20. Mateș L, Rusu ME, Popa DS. Phytochemicals and biological activities of walnut septum: A systematic review. Antioxidants [Internet]. 2023. [Consultado el 20 de julio de 2024]; 12(3), 604. https://doi.org/10.3390/antiox12030604 DOI: https://doi.org/10.3390/antiox12030604
21. Sharma N, Ghosh P, Sharma UK, Sood S, Sinha AK, Gulati A. Microwave-assisted efficient extraction and stability of juglone in different solvents from Juglans regia: quantification of six phenolic constituents by validated RP-HPLC and evaluation of antimicrobial activity. Analitical Letters. 2009. 42(16), pp. 2592–609. https://doi.org/10.1080/00032710903202055 DOI: https://doi.org/10.1080/00032710903202055
22. Hosseini S, Huseini HF, Larijani B, Mohammad K, Najmizadeh A, Nourijelyani K. et al. The hypoglycemic effect of Juglans regia leaves aqueous extract in diabetic patients: A first human trial. DARU Journal of Pharmaceutical Sciences, 2014. 22(1), pp. 1–5. DOI: https://doi.org/10.1186/2008-2231-22-19
23. Azzurra S, Lorenza M, Llorent-Martínez EJ, Gokhan Z, Onur B, Rumeysa D. Assessment of the in-vitro toxicity and in-vivo therapeutic capabilities of Juglans regia on human prostate cancer and prostatic hyperplasia in rats, Food Bioscience. [Internet]. 2024. [Consultado el 20 de julio de 2024]; 57, 103539 https://doi.org/10.1016/j.fbio.2023.103539. DOI: https://doi.org/10.1016/j.fbio.2023.103539
24. Zhang Q, Yu S, Pei X, Wang Q, Lu A, Cao Y. et al. Within-and between-population variations in seed and seedling traits of Juglans mandshurica. Journal of Forest Research. [Internet]. 2022. [Consultado el 20 de julio de 2024]; 33(4), pp. 1175–86. https://doi.org/10.3390/ molecules200915572 10.1007/s11676-021-01387-9 DOI: https://doi.org/10.1007/s11676-021-01381-1
25. Rodríguez M. Caracterización anatómica de las maderas latifoliadas y claves macro y microscópica para la identificación de 120 especies. [Tesis de Ingeniería Forestal]. Caldas: Universidad Distrital Francisco José de Caldas; 1988.
26. Alvarado-Ugsiña JM. Determinación de las propiedades físicas y químicas de la madera de cinco especies forestales procedentes de la parroquia Multitud, cantón Alausí, provincia de Chimborazo [Tesis de ingeniería forestal]. Riobamba: Escuela Superior Politécnica de Chimborazo 2021. Repositorio DSPACE de la Escuela Superior Politécnica de Chimborazo. http://dspace.espoch.edu.ec/handle/123456789/15891
27. Cartuche-Peralta KM. Caracterización de la madera de 95 especies forestales del sur de Ecuador con base a sus propiedades físicas, organolépticas y anatómicas. [Tesis de Ingeniería Forestal]. Loja. Universidad Nacional de Loja; 2022. Repositorio digital Universidad Nacional de Loja. https://dspace.unl.edu.ec/jspui/handle/123456789/24554
28. Gómez ML, Toro JL, Piedrahita E. Propagación y conservación de especies arbóreas nativas. Medellín, Colombia: Corporación Autónoma Regional del Centro de Antioquia-CORANTIOQUIA; 2013.
29. Fierro A. Caracterización dasométrica de familias de Junglans neotropica Diels recolectadas en la provincia de Tungurahua. [Tesis de ingeniería forestal]. Riobamba: Escuela Superior Politécnica de Chimborazo; 2023.
30. Fundación desde el Surco. Factibilidad agroindustrial de la cadena agroproductiva del nogal, Juglans neotropica Diels, para un sistema de reforestación productiva. Fondo para la protección del agua, FONAG; 2006.
31. Centro Agronómico Tropical de Investigación y Enseñanza (CATIE). Juglans neotropica Diels. Nota técnica sobre semillas forestales Núm.82. Turrialba, Costa Rica; 1999.
32. Wonder S. Poverty alleviation and tropical forest-what scope for synergies? World Development. 2001; 29(11): 1817-1833. DOI: https://doi.org/10.1016/S0305-750X(01)00070-5
33. Myers N. Tropical deforestation and a megaextintion spasm. En: Soulé, M. E. (Ed). Conservation biology: the science of scarcity and diversity. Sinauer Associates, Sunderland, Massachusetts, United States; 1986.
34. Hernández G. Diversidad genética de poblaciones forestales en paisajes fragmentados. El caso de las poblaciones de olla de mono (Lecythis ampla) en el Corredor Biológico San Juan La Selva. Ambientico. 2012. 229(5): 29–36.
35. Liu J, Magige EA, Fan PZ, Wambulwa MC, Luo YH, Qi HL, et al. Genetic imprints of grafting in wild iron walnut populations in southwestern China. BMC Plant Biology. [Internet]. 2023. [Consultado el 21 de julio de 2024]; 23:423. https://doi.org/10.1186/s12870-023-04428-z DOI: https://doi.org/10.1186/s12870-023-04428-z
36. Cornelius J, Ugarte J, Simons A. El papel de la domesticación de árboles agroforestales En el “desarrollo con protección ambiental”. 2007.
37. Cornelius J, Ugarte J. Introducción a la genética y domesticación forestal para la agroforestería y silvicultura. Lima – Perú. 2010. Notas de clases. Centro Mundial para la Agroforestería (ICRAF). 124p.
38. Piñeiro D. La diversidad genética como un instrumento para la conservación y el aprovechamiento de la biodiversidad: estudios de especies mexicanas, en Capital natural de México, volumen I Conocimiento actual de la biodiversidad. Conabio, México. 2008; 437-494.
39. Armenteras D, Rodríguez N. Dinámicas y causas de deforestación en bosques de latino américa: una revisión desde 1990. Colombia Forestal. 2014; 17(2): 233-246. DOI: https://doi.org/10.14483/udistrital.jour.colomb.for.2014.2.a07
40. Karp A. The new genetic era: will it help us in managing genetic diversity? SAT 21 Meeting, IPGRI, FRIM, Kuala Lumpur, Malasia; 2000.
41. Juanes F, Pérez J, García E. Reproductive strategies in small populations: using Atlantic salmon as a case study. Ecology of Freshwater Fish. 2007; 16(4): 468-475. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1600-0633.2007.00224.x
42. Laikre L, Allendorf FW, Aroner LC, Baker CS, Gregovich DP, Hansen MM. et al. Neglect of genetic diversity in implementation of the convention on biological diversity. Conservation Biology. 2010; 24(1):86-88. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1523-1739.2009.01425.x
43. Frankham R, Ballou JD, Briscoe DA. Introduction to Conservation Genetics. (1ed.) Cambridge: Cambridge University Press; 2002. DOI: https://doi.org/10.1017/CBO9780511808999
44. Aguirre N, Mogrovejo P, Ordoñez L, Hofstede R. Identificación y selección de fuentes semilleras de especies Forestales nativas en los bosques andinos del Ecuador. Proyecto EcoPar. Quito, Ecuador; 2001a.
45. Alizoti P, Bastien JC, Chakraborty D, Klisz MM, Kroon J, Neophytou C. et al. Non-Native Forest Tree Species in Europe: The Question of Seed Origin in Afforestation. Forests. [Internet]. 2022. [Consultado el 18 de agosto de 2024]; 13, 273. https://doi.org/10. 3390/f13020273 DOI: https://doi.org/10.3390/f13020273
46. López O. Estudios de Economía forestal en el marco de la Misión de Crecimiento Verde en Colombia. Resumen ejecutivo. INFOANDINA, Global Green Growth Institute. Colombia: Gobierno de Colombia; 2018.
47. Plancarte BA. Manual para el establecimiento y evaluación de ensayos de especies y procedencias. Boletín Técnico 4. Centro de Genética Forestal A. C. Chapingo, México; 1990.
48. Murillo O, Espitia M, Castillo C. Fuentes Semilleras para la Producción Forestal. (1ª ed.) Editorial Domar S.A.S. Bogotá, Colombia: 2012.
49. Murillo O, Guevara V. Estado de los recursos genéticos forestales de Costa Rica. MINAET/FAO/CONAGEBIO. San José, Costa Rica; 2013.
50. Resende MDV. Software Selegen-REML/BLUP: a useful tool for plant breeding. Crop Breeding and Applied Biotechnology, Internet]. 2016. [Consultado el 20 de junio de 2024]; 6:330-339. https://doi.org/10.1590/1984-70332016v16n4a49 DOI: https://doi.org/10.1590/1984-70332016v16n4a49
51. Zhao X, Hou W, Zheng H, Zhang Z. Analyses of genotypic variation in white poplar clones at four sites in China. Silvae Genetica. [Internet]. 2013. [Consultado el 20 de junio de 2024]; 62(4): 187–195. https://doi.org/10.1515/sg-2013-0023 DOI: https://doi.org/10.1515/sg-2013-0023
52. Zhao X, Bian X, Li Z, Wang X, Yang C, Liu G. et al. Genetic stability analysis of introduced Betula pendula, Betula kirghisorum, and Betula pubescens families in saline-alkali soil of northeastern China. Scandinavian Journal of Forest Research. [Internet]. 2014. [Consultado el 20 de julio de 2024]; 29(7): 639–49. https://doi.org/10.1080/02827581.2014.960892 DOI: https://doi.org/10.1080/02827581.2014.960892
53. Ramos-Veintimilla RA, Murillo-Gamboa O, Gallo LA. Potencial de mejoramiento genético en Juglans neotropica Diels, a los 10 meses de edad en Tunshi, Chimborazo in VI Congreso Internacional De La Ciencia, Tecnología, Emprendimiento E Innovación 2019, KnE Engineering; [Internet]. 2020. [Consultado el 20 de junio de 2024]; 562-575. https://knepublishing.com/index.php/KnE-Engineering/article/view/6278
54. Sebastian-Azcona J, Hacke U, Hamann A. Xylem Anomalies as Indicators of Maladaptation to Climate in Forest Trees: Implications for Assisted Migration. Frontiers in Plant Science. [Internet]. 2020. [Consultado el 20 de junio de 2024]; 11, 208. https://doi.org/10.3389/fpls.2020.00208 DOI: https://doi.org/10.3389/fpls.2020.00208
55. Soolanayakanahally RY, Guy RD, Street NR, Robinson KM, Silim SN, Albrectsen BR. et al. Comparative physiology of allopatric Populus species: geographic clines in photosynthesis, height growth, and carbon isotope discrimination in common gardens. Frontier in Plant Science. 2015; 6, 528. https://doi.org/10.3389/fpls.2015.00528 DOI: https://doi.org/10.3389/fpls.2015.00528
56. Holdridge L. Ecología basada en zonas de vida (Traducido del inglés por Humberto Jiménez. Edición I. II reimpresión. II Capítulo. 1982.
57. Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias (INIAP). Resultados de análisis químico de suelo. Reporte de laboratorio de Manejo de Suelos y Aguas. 2023.
58. Flores C, López J, Valencia S. Manual técnico para el establecimiento de ensayos de procedencia y/o progenie. Comisión Nacional Forestal, CONAFOR, México, 2014.
59. Ladrach W. Manejo práctico de plantaciones forestales en el trópico y subtrópico. Editorial Tecnológica de Costa Rica. Costa Rica. 2010.
60. Samaniego-Rojas C. Las fuentes semilleras y semillas forestales nativas en el austro ecuatoriano: participación social en el manejo. Fundación Ecológica Condesur, Loja, Ecuador. 2002.
61. Resende Marcos DV, Murillo Olman, Badilla Yorleny. Genética Cuantitativa y Selección en el Mejoramiento Forestal. Editorial Tecnológica de Costa Rica. Cartago, Costa Rica. 2018.
62. Jiménez A, Jiménez D, Badilla Y, Murillo O. Manejo de una unidad de conservación ex situ de Swietenia macrophylla de diecisiete años de edad ubicado en el CATIE, Turrialba, Costa Rica. XII. Simposio Int. Manejo Sostenible de Recursos Forestales 22-24 Nov. Facultad Ciencias Forestales y Agropecuarias, Universidad Pinar del Río, Cuba. 2023.
63. Ettori LC, Figliolia MB, Sato AS. Ex situ conservation of genetic resources of native forest species: current situation at the Forest Institute. In: HIGA, A. R.; DUQUE, S. L. (ed.). Orchard of seeds of native forest species. Curitiba, Paraná: Fundação de Pesquisas Florestais do Paraná, 2006.
64. Resende MDV. Genética Quantitativa e de populações. Viçosa, Minas Gerais: Suprema. 2015.
65. Bonfim de Oliveira SD, Gomes de Farias SG, Resende RT, Cardoso CR, Bezerra e Silva R, Tambarussi EV. Genetic variability and ex situ conservation strategies for the neotropical tree Parkia platycephala Benth. Ciencia Forestal. 2023; 33(1), https://doi.org/10.5902/1980509864058 DOI: https://doi.org/10.5902/1980509864058
66. Sebbenn AM, Freitas MLM, Zanatto ACS, Moraes E, Moraes MA. Conservação ex situ e pomar de sementes em banco de germoplasma de Balfourodendron riedelianum. Revista Instituto Florestal. 2007; 19(2): 101-112. DOI: https://doi.org/10.24278/2178-5031.2007192353
67. Kubota TYK, Moraes MA, Silva ECB, Pupin S, Aguiar AV, Moraes MLT. et al. Genetic variability of silvicultural traits in opened-pollinated progenies of Balfourodendron riedelianum (Engler). Scientia Forestalis. 2015; 43 (106): 407-415.
68. Aguiar BI, Freitas MLM, Tavares YR, Tambarussi EV, Zanatto B, Gandara FB. et al. Genetic control of silvicultural traits in Balfourodendron riedelianum (ENGL.) ENGL. Silvae Genética. [Internet]. 2019. [Consultado el 19 de julio de 2024]; 68(1): 73-78. https://doi.org/10.2478/sg-2019- 0013 DOI: https://doi.org/10.2478/sg-2019-0013
69. Pavlotzky B, Murillo O. Ganancia genética esperada en Acacia mangium en Los Chiles, Costa Rica. Agronomía Mesoamericana. 2012; 23: 1-13. DOI: https://doi.org/10.15517/am.v23i1.2138
70. Murillo O, Resende MDV, Badilla Y, Gamboa JP. Genotype by environment interaction and teak (Tectona grandis L.f.) selection in Costa Rica. Silvae Genetica. [Internet]. 2019 [Consultado el 21 de agosto de 2024]; 68:116-121. https://doi.org/10.2478/ sg-2019-0020 DOI: https://doi.org/10.2478/sg-2019-0020
71. Hernández W, Badilla Y, Murillo O. Selección temprana en ensayos clonales de melina (Gmelina arborea Robx.) en Costa Rica. Agronomía Mesoamericana. [Internet]. 2021. [Consultado el 19 de agosto de 2024]; 32(1):93-106. http://dx.doi.org/10.15517/am.v32i1.42069 DOI: https://doi.org/10.15517/am.v32i1.42069
72. Rodríguez-Pérez D, Moya R, Murillo O. Effect of stem height in variation of bark, heartwood, sapwood and physical properties of wood in Dipteryx panamensis Pittier in a provenance/progeny test. Ciencias Florestais. [Internet]. 2022 [Consultado el 19 de agosto de 2024]; 32(1): 141-162. https://doi.org/10.5902/1980509843606 DOI: https://doi.org/10.5902/1980509843606
73. Rossi FS, Rossi AAB, Dardengo JFE, Brauwers LR, Silva ML, Sebbenn AM. Genetic diversity in natural populations of Mauritia flexuosa (Arecaceae) using ISSR markers. Scientia Forestalis. 2014; 42(104: 631-639
74. León N, Murillo O, Badilla Y, Ávila C, Murillo R. Expected genetic gain and genotype by environment interaction in almond (Dipteryx panamensis Pittier Rec. and Mell in Costa Rica. Silvae Genetica. 2017. 66:9-13. https://doi.org/10.1515/sg-2017-0002 DOI: https://doi.org/10.1515/sg-2017-0002
75. Filomeno SR. Potencial de mejoramiento genético en Dipteryx panamensis Pittier (FABACEAE). [Tesis M.Sc.] Costa Rica: Instituto Tecnológico de Costa Rica. Escuela de Ing. Forestal. Cartago; 2018.
76. Quesada S, Alfaro C, Murillo O, Badilla Y, Luján R. Evaluación del comportamiento de clones de Tectona grandis L.f. en suelos vertisoles de la Península de Nicoya, Costa Rica. Revista Forestal Mesoamericana. Kurú. 2018; 16 (38): 24-34. http://dx.doi.org/10.18845/rfmk.v16i38.3993 DOI: https://doi.org/10.18845/rfmk.v16i38.3993
77. Jiménez A. Propuesta de manejo de tres ensayos genéticos de Swietenia macrophylla en el CATIE, Turrialba, Costa Rica. [Tesis Lic. Instituto]. Cartago, Costa Rica: Tecnológico de Costa Rica. Escuela de Ing. Forestal; 2021.
78. Sebbenn A, Siqueira A, Kageyama P, Machado J. Parâmetros genéticos na conservação da cabreúva – Myroxylon peruiferum L.F. Allemão [Parámetros genéticos en la conservación de la cabreúva-Myroxylon peruiferum L.F. Allemão. Scientia Forestalis, Piracicaba. 1998; (53): 31-38.
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